Методы микробиологического контроля почвы методические рекомендации статус

4.1. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

МЕТОДЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО КОНТРОЛЯ ПОЧВЫ

Дата введения: с момента утверждения

1. РАЗРАБОТАНЫ сотрудниками: Федерального научного центра гигиены им. Ф.Ф.Эрисмана (Трухиной Г.М., Мойсеенко Н.Н.), Федерального центра Госсанэпиднадзора Минздрава России (Брагина И.В., Кривопалова Н.С., Белобородова O.К., Гончарук О.Д.), центра ГСЭН в Краснодарском крае (Калашников И.А., Щербина Л.И.).

2. УТВЕРЖДЕНЫ И ВВЕДЕНЫ В ДЕЙСТВИЕ Заместителем главного государственного санитарного врача Российской Федерации — Главным врачом Федерального центра Госсанэпиднадзора Минздрава России Е.Н.Беляевым 24.12.2004 г.

3. ВВЕДЕНЫ ВПЕРВЫЕ.

1. Область применения

Настоящий документ является методической базой для осуществления государственного санитарно-эпидемиологического надзора за санитарным состоянием почв населенных мест, сельскохозяйственных угодий, территорий курортных зон и отдельных учреждений. Документ предназначен для лабораторий учреждений Государственной санитарно-эпидемиологической службы Российской Федерации, а также лабораторий других организаций, аккредитованных в установленном порядке на право проведения указанных испытаний.

2. Нормативная ссылка

1.1. Почва, очистка населенных мест, бытовые и промышленные отходы, санитарная охрана почвы. Санитарно-эпидемиологические правила и нормы СанПиН 2.1.7.1287-03

1.2. ГОСТ 17.4.3.01-83. Общие требования к отбору проб почвы

1.3. ГОСТ 17.4.4.02-84. Методы отбора и подготовки проб для химического, бактериологического, гельминтологического анализа

1.4. МУ 2.1.7.730-99 Гигиеническая оценка качества почвы населённых мест

1.5. МУ по санитарно-микробиологическому анализу лечебных грязей N 143-9/316-17

1.6. МУК 4.2.1018-01 Санитарно-микробиологический анализ питьевой воды

3. Санитарно-бактериологические показатели почвы и их нормирование

Санитарное состояние почвы — совокупность физико-химических, биологических свойств почвы, определяющих качество и степень её безопасности в эпидемическом и гигиеническом отношении.

Состав микрофлоры почвы меняется в зависимости от ее глубины. В поверхностном слое почвы (0-10 см) количество микроорганизмов незначительно; это связано с губительным действием прямого солнечного света и низкой влажности почвы. Максимальное количество микроорганизмов обнаруживается на глубине 10-30 см. На глубине 1 м выявляются единичные клетки бактерий. Наиболее богата микроорганизмами культурная возделываемая почва (до 5 млрд клеток на 1 г почвы), наименее — почва, бедная влагой и органическими веществами (200 млн клеток в 1 г).

Оценка санитарного состояния почвы проводится по результатам анализов почв на объектах повышенного риска (детские сады, игровые площадки, зоны санитарной охраны и т.п.) и в санитарно-защитных зонах по санитарно-бактериологическим показателям, которые делятся на косвенные и прямые:

1) Косвенные характеризуют интенсивность биологической нагрузки на почву. Это — санитарно-показательные микроорганизмы: бактерии группы кишечной палочки (общие колиформные бактерии) и энтерококки. В крупных городах с высокой плотностью населения биологическая нагрузка на почву очень велика и как следствие, высоки индексы санитарно-показательных микроорганизмов, что наряду с санитарно-химическими показателями (динамика аммиака и нитратов, санитарное число), свидетельствует о неблагополучии и создании повышенного риска инфицирования. На свежее фекальное загрязнение почвы указывает наличие высокого индекса БГКП при низких титрах нитрификаторов, термофилов, а также относительно высокое содержание вегегативных форм С. perfringens. Обнаружение энтерококков всегда свидетельствует о свежем фекальном загрязнении, каковы бы ни были другие показатели.

2) Прямые санитарно-бактериологические показатели эпидемической опасности почвы — обнаружение возбудителей кишечных инфекций (патогенные энтеробактерии, энтеровирусы).

Результаты анализов оцениваются в соответствии с таблицей N 1.

Оценка степени эпидемической опасности почвы

Источник

Методы микробиологического контроля почвы. Методические рекомендации

Купить бумажный документ с голограммой и синими печатями. подробнее

Цена на этот документ пока неизвестна. Нажмите кнопку «Купить» и сделайте заказ, и мы пришлем вам цену.

Распространяем нормативную документацию с 1999 года. Пробиваем чеки, платим налоги, принимаем к оплате все законные формы платежей без дополнительных процентов. Наши клиенты защищены Законом. ООО «ЦНТИ Нормоконтроль»

Наши цены ниже, чем в других местах, потому что мы работаем напрямую с поставщиками документов.

Способы доставки

Срочная курьерская доставка (1-3 дня)
Курьерская доставка (7 дней)
Самовывоз из московского офиса
Почта РФ

Документ является методической базой для осуществления государственного санитарно-эпидемиологического надзора за санитарным состоянием почв населенных мест, сельскохозяйственных угодий, территорий курортных зон и отдельных учреждений. Документ предназначен для лабораторий учреждений Государственной санитарно-эпидемиологической службы Российской Федерации, а также лабораторий других организаций, аккредитованных в установленном порядке на право проведения указанных испытаний

Дата введения	01.02.2020
Добавлен в базу	01.01.2019
Актуализация	01.02.2020

Раздел Экология
- Раздел 13 ОХРАНА ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ, ЗАЩИТА ЧЕЛОВЕКА ОТ ВОЗДЕЙСТВИЯ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ. БЕЗОПАСНОСТЬ
  - Раздел 13.080 Качество грунта. Почвоведение
    - Раздел 13.080.05 Исследование почв в целом

Организации:

24.12.2004	Утвержден	Заместитель Главного Государственного санитарного врача Российской Федерации	ФЦ/4022
Разработан	Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России
Разработан	Федеральный научный центр гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана
Разработан	Центр ГСЭН в Краснодарском крае

Чтобы бесплатно скачать этот документ в формате PDF, поддержите наш сайт и нажмите кнопку:

Государственная система санитарно-эпидемиологического нормирования Российской Федерации

4.1. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО КОНТРОЛЯ ПОЧВЫ

Методы микробиологического контроля почвы. Методические рекомендации-М: Федеральный центр госсшюгшдтшдзора Минздрава России, 2004 г.

1. Разработаны сотрудниками: Федерального научного цетра гигиены им, Ф.Ф.Эрисмана (Трухиной Г.М., Моисеенко Н. Н.), Федерального центра госсанэпиднадзора Минздрава России (Брагина И,В., Кривопалова Н.С., Белобородова О.К., Гончарук О.Д.), центра ГСЭН в Краснодарском крае (Калашников И.А, Щербина ЛЛ).

2. Утверждены и введены в действие Заместителем главного государственного санитарного врача Российской Федерации — Главным врачом Федерального центра госсанэпиднадзора Минздрава России Е.Н.Бедяевым 24.12.2004г. 1

Бактерии группы кишечной палочки включают следующие роды: эшери-хия, клебсиелла, энтеробактер, цитробактер и серрации.

При анализе почв, для которых предполагается невысокая степень фекального загрязнения, рекомендуется проводить определение титрациошгым методом. В качестве ускоренного метода для анализа слабозагрязненных почв рекомендуется использовать метод мембранной фильтрации. При анализах проб с предполагаемой высокой степенью фекального загрязнения можно проводить прямой поверхностный посев разведении суспензии на поверхность среды Эндо.

Для исследования используют предварительно подготовленные почвенные суспензии и разведения по описанной выше методике.

Титрационный метод определения индекса ЕГКП (колиформ) в почве*

Из первого разведения почвенной суспензии (1:10), прошедшей предварительную обработку, стерильной пипеткой берут 10,0 см 1 засевают во флаконы с 90,0 см 3 жидкой лактозо-пептонной среды (ЛПС) или среды Кесслера, что соответствует засеву 1г почвы. Соотношение между навеской почвы или ее эквивалентным разведением и питательной средой 1:9, а для сред двойной концентрации -1:1.

Посев меньших количеств (0,01 г, 0,001 г то есть 10 2 , 10 1 и т.д.) делают по 1,0 см 3 из соответствующих разведении почвенной суспензии в пробирки с 9,0 см 1 тех же сред. Титрование проводят до разведения 1: 1000000, то есть 10 6 с регулярной сменой пипеток при переходе от одного разведения к другому. Посевы инкубируют в течение 48ч. при (37±1)°С, через (24±2)ч. инкубации проводят предварительную оценку посевов. Отсутствие газообразования и помутнения через 48ч инкубации выдают окончательный, отрицательный ответ.

При наличии в посевах признаков роста: помутнения и газообразования или только помутнения, производится высев на поверхность среды Эндо.

Чашки с посевами помещают в термостат на (18-24)ч. при температуре (37±1)°С. При отсутствии роста на чашках выдают отрицательный ответ. При наличии на поверхности среды Эндо розовых или красных колоний, малиновых с металлическим блеском или без него проводят микроскопию колошш с последующей постановкой оксид аз ного теста. Оксидазный тест предназначается для дифференциации бактерий семейства Enterobacteriaceae от бактерий рода Pseudomonoas и других видов сапрофитных бактерий. Микроскопирование и постановка оксидазного теста проводится по МУК 4.2.1078-01.

При наличии оксидазоотрицательньтх трам (-)палочек по 2-3 колонии каждого типа засевают параллельно в 2 пробирки ь полужидкую или жидкую с поплавком среду с лактозой, разлитую в пробирки в количестве 4,0-5,0 см 1 , для подтверждения ферментации лактозы при температуре (37 ±1)°С Учёт производят через 18 ч. инкубации. Если за это время происходит образование кислоты и газа, это свидетельствует о наличии бактерий группы кишечных палочек.

Признаком газообразования является появление пузырьков газа, об образовании кислоты свидетельствует изменение цвета среды. При появлении только кислоты, пробирки оставляют в термостате для окончательного ответа ещё на 24 ч, при отсутствии газообразования через этот срок выдают окончательный, отрицательный ответ, при появлении газообразования — положительный ответ. После выявления БГКП устанавливают титр, при этом принимается то предельное разведение почвы, в котором обнаруживаются колиформы. Для перевода титра в индекс необходимо 1000 разделить на число, выражающее титр. Так, при титре 0,01 индекс равен 100, а при титре 0,1 индекс равен 10.

Определение БГКБ в почве методом мембранной фильтрации.

В качестве ускоренного метода для обнаружения колиформных бактерий целесообразно использовать метод мембранных фильтров.

Для микробиологических целей используются фильтры с диаметром пор 0,45 мкм и размером диска 35 или 47 мм и другие фильтрующие мембраны с аналогичной способностью фильтрации, имеющие сертификат качества. Метод основан на фильтрации установленного объема — 5,0-10,0 см 3 почвенной суспензии первого разведения (1:10) — через мембранные фильтры, выращивании посевов на дифференциальной, питательной среде с лактозой и последующей идентификации колоний по культуральным и биохимическим свойствам. Для того чтобы облегчить фильтрование почвенной суспензии через мембранный фильтр, желательно до фильтрования провести предварительную обработку.

Мембранные фильтры должны быть подготовлены к анализу в соответствии с указаниями изготовителя.

Подготовка фильтровального аппарата

Воронку и столик фильтровального аппарата обтирают марлевым (ватным) тампоном, смоченным спиртом ректификованным, и фламбируют. После охлаждения на столик фильтровального аппарата кладут фламбированным пинцетом стерильный мембранный фильтр, прижимают его воронкой.

В воронку прибора для фильтрования наливают отмеренный объем, затем создают вакуум.

При посеве нескольких объемов одной пробы следует фильтровать через один фильтровальный аппарат без обеззараживания сначала меньшие, а затем большие объемы, меняя каждый раз фильтры. Перед фильтрованием каждой новой пробы прибор обеззараживают.

Следует начинать с фильтрования проб, которые предположительно не загрязнены, а затем фильтровать загрязненные пробы. После окончания фильтрования и осушения фильтра отключают вакуум, воронку снимают, фильтр осторожно поднимают за край фламбированным пинцетом и переносят его, не переворачивая, на питательную среду Эндо с добавлением розолевой кислоты.

разлитую в стерильные чашки Петри, избегая пузырьков воздуха между средой и фильтром. Эта среда используется только при работе методом мембранной фильтрации. Поверхность фильтра с осевшими на ней бактериями должна быть обращена вверх.

Под каждым фильтром на дне чашки делают надпись с указанием объема профильтрованной пробы, номера и даты посева. На одну чашку можно поместить 3-4 фильтра с условием, чтобы фильтры не соприкасались.

Чашки с фильтрами ставят в термостат дном вверх и инкубируют посевы при температуре (37±1)°С в течение (24±2)ч.

Если на фильтрах нет роста или выросли колонии пленчатые, губчатые, плесневые, прозрачные, расплывчатые, выдают отрицательный ответ: отсутствие БГКБ в исследуемой почве.

Анализ заканчивают через 24 ч.

Если на фильтрах обнаружен рост изолированных типичных лактозоположительных колоний: темно-красных, красных с металлическим блеском или без него или других подобного типа колоний с отпечатком на обратной стороне фильтра, подсчитывают число колоний каждого типа отдельно и приступают к подтверждению их принадлежности к БГКБ.

Для подтверждения наличия БГКБ исследуют:

• все колонии, если на фильтрах выросло менее 5 колоний;

* не менее 3-4 колоний каждого типа.

Каждую выбранную изолированную колонию исследуют на:

• наличие оксидазной активности;

• принадлежность к Граму (микроскопия окрашенного по Граму препарата или постановка теста Грегерсена);

• ферментацию лактозы до кислоты и газа.

Для расчета индекса, количества бактерий группы кишечных палочек, выросших в анализируемом объеме почвы, умножают на 1000 и делят на этот объем.

Прямой поверхностный посев на агаризованные питательные среды для учета БГКП в почве

При анализе загрязненных и сильно загрязненных почв, отобращгых в местах интенсивного фекального за^язнеиия рекомендуется проводить прямой поверхностный посев почвенной суспензии в количестве 0,1 или 0,2 см 3 на поверхность среды Эндо и немедленно равномерно распределяют по поверхности шпателем. Посев при

анализах сравнительно чистых почв производится из разведении от 1:10 до 1:1000, то есть от 10 1 до 10\ При работе с загрязненными почвами обычно используют разведения до IQ 6 , Посевы выращивают в термостате при (37±1)°С в

течении 24 ч. Следующий этап исследований заключается в идентификации выросших микроорганизмов, который проводится аналогично определению общих колиформных бактерий итерационным методом и подсчёту количества колиформных бактерий в 1г почвы, для чего среднее число колиформных колоний, выросших на чашке умножается на степень десятикратного разведения.

Энтерококки — грамположительные, не образующие каталазу кокки, слегка вытянутые с заостренными концами, располагающиеся в виде диплококков или коротких цепочек, реже одиночными кокками. Полиморфны. При росте на жидких средах (ЛПС- лактозо-пептонная среда, ЩЭС — щелочно -полимиксиновая среда) вызывают диффузное помутнение и образование осадка.

Подготовка проб и приготовление разведений указаны выше.

Титрационный метод.

Из разведений почвенной суспензии, прошедшей предварительную обработку, стерильной пипеткой берут 10,0 см 3 и засевают во флаконы с 50 см 3 жидкой среды (ЛПС или ЩЭС). Посевы инкубируют при температуре (37±0,5)°С 24 ч. Из порции среды накопления, где отмечены признаки роста, производят высев петлей на одну из плотных сред (МИС — молочноингибиторная среда, ЖСТ — желточная среда Турчинского). Если через 24 ч признаки роста отсутствуют, посевы оставляют еще на сутки. В случае отсутствия роста дают отрицательный ответ.

Через 24-48 ч инкубации посевов на молочно-ингибиторной среде при температуре (37±0_Т5)°С в качестве положительных результатов отмечают наличие аспидно-черных, выпуклых с металлическим блеском, или сероватых, мелких колоний. Эта среда позволяет дифференцировать виды энтерококов: Е. faecalis образует аспидно-черные выпуклые колонии с металлическим блеском, Е. faecalis биовар liguefaciens — такие же колонии, окруженные зоной просветления, Е. faecium биовар durans — серые, мелкие, плоские колонии.

Для подтверждения наличия энтерококков делают микроскопию окрашенных по Граму мазков и каталазный тест. После выявления энтерококков устанавливают титр, при этом принимается то предельное разведение почвы, в котором обнаруживаются колиформы. Для перевода титра в индекс необходимо 1000 разделить на число, выражающее титр. Так, при титре 0,01 индекс равен 100, а при титре 0,1 индекс равен 10.

Метод мембранных фильтров

Объем испытуемой пробы для посева выбирают с таким расчетом, чтобы не менее чем ыа 2-х фильтрах выросли изолированные колонии в количестве от 5 до 50.

Через мембранные фильтры профильтровывают 2-3 десятикратных объема испытуемой пробы. Фильтры с посевом помещают на азидную среду или среду ЖСТ и инкубируют при температуре 37±0,5°С в течение 24 -48 часов.

Учет результатов на среде ЖСТ.

Учет результатов на среде ЖСТ производят через 24-28 часов. Для учета выбирают фильтры, на которых выросло не более 20-30 колоний. Подсчитывают характерные для энтерококков колонии: плоские крупные с ровными краями, белые или бледно-окрашенные с небольшим кремовым или розовым оттенком, а также малиновые. Последние образованы Е. faecalis.

Если выросли колонии другого вида — выпуклые белые мелкие или ярко окрашенные, то их принадлежность к энтерококкам можно подтвердить по отсутствию каталазной активности и по характерной морфологии клеток при микроскопии мазков, окрашенных по Граму.

Каталазный тест можно выполнить путем нанесения петлей капли 3% перекиси водорода на подозрительные колонии. Более точно каталазный тест выполняют на предметном стекле, нанося петлей культуру и после подсушивания на воздухе, добавляя каплю свежеприготовленной 3% перекиси водорода и прикрывая покровным стеклом. Наличие пузырьков газа — положительный тест.

Учет результатов на азидной среде.

Для учета выбирают фильтры, на которых выросло от 5 до 50 колоний.

Подсчитывают колонии, характерные для энтерококков: выпуклые, с ровными краями, розовые, светло-розовые, равномерно окрашенные или с темно-красным не четко оформленным центром.

Как правило, все колонии, которые растут на азидной среде, можно отнести к фекальным энтерококкам, имеющим индикаторное значение.

Очень мелкие (на пределе видимости невооруженным глазом), плоские разных оттенков колонии не учитывают.

При необходимости подтвердить наличие энтерококков по 2-3 колонии каждого типа микроскопируют после окраски по Граму.

При обнаружении в мазках грамаоложительиых полиморфных диплококков дают положительный ответ.

Вычисление индекса энтерококков.

Подсчитанное число колоний энтерококков суммируют и делят на объем профильтрованный через фильтры, на которых велся подсчет.

Для расчета индекса, количество колоний энтерококков суммируют, умножают на 1000 и делят на объем, профильтрованный через фильтры, на кото-

рых велся подсчет.

9. Определение CL perfringens в почве

Су л ь ф итреду ц ирую и\ие клостридии — спорообразующие анаэробные

палочковидные микроорганизмы, редуцирующие сульфит натрия на железосульфитном агаре при температуре (44±1)°С в течение (16-18) ч.

Метод основан на выращивании посевов в железо-сульфитном агаре в условиях, приближенных к анаэробным, н подсчете числа черных колоний.

Посев почвенных разведений в среде Вильсон — Клера

Из приготовленных почвенных разведений (до 1:10 6 ) прогретых при температуре (75±5) & С в течение 20 минут для исключения вегетативных форм, по 1,0 см 3 переносится в два параллельных ряда пробирок. Затем во все пробирки наливают по 9-10 см 3 горячего железо-сульфитного агара, приготовленный ех tempore и прогретого до 70-80°С (среду заливают по стенке пробирки, избегая образования пузырьков). Для создания анаэробных условий роста пробирки быстро охлаждают, помещая в емкости с холодной водой. Посевы инкубируют при (ФШ)°С в течение 16-18 часов. При росте в среде черных крупных колоний (грамположительные, каталаэоотрицательные) выдают положительный ответ о присутствии С. perfringens в 1 г почвы.

Определение методом фильтрования в пробирках.

Перед посевом пробирки с железо-сульфитным агаром расплавляют на водяной бане (не кипятить!). В течение посева поддерживают среду нагретой до (70-80)°С в водяной бане.

После фильтрования установленное объема мембранный фильтр фламби-рованным пинцетом берут за два противоположных края и согнутый в виде трубочки помещают в пробирку с горячим агаром. Сторона фильтра с осевшими бактериями обращена внутрь. При этом фильтр распрямляется и располагается по стенке пробирки.

Сразу же после посева пробирку с агаром и фильтром для создания анаэробных условий быстро охлаждают, помещая в емкость с холодной водой. Культивируют посевы при (44±1 )°С в течение (16-18) ч.

Определение методом фильтрования в чашках Петри.

Чашки Петри заливают тонким слоем железо-сульфитного агара 4,0-5,0 см 3 . После фильтрации, фильтр помещают фильтрующей поверхностью вниз на за-

стывшую питательную среду так, чтобы под фильтром не было пузырьков воздуха. Затем заливают расплавленным железо-сульфитным агаром до верхнего края чашки, чтобы крышка плотно прилегала к среде для создания анаэробных условий. Культивируют посевы при (44i:l)°C в течение (16-18) ч.

Подсчитывают черные колонии, выросшие как на фильтрах, так и в толще питательной среды. При отсутствии роста на всех фильтрах — дают отрицательный ответ.

10. Показатели биологической активности почвы

Основными интегральными показателями биологической активности являются: общая микробная численность (ОМЧ), определение актиномицетов, аммонификаторов, нитрификатов и др.

Определение общей численности почвенных микроорганизмов (ОМЧ)

Для более полного учета общей численности сапрофитных микроорганизмов диспергирование и десорбцию клеток с поверхности почвенных частиц рекомендуется проводить следующим способом. Навеску почвы, используемую для приготовления первого разведения, доводят путем добавления небольшого количества стерильной водопроводной воды до пастообразного состояния, растирают в течение 5 минут. Затем готовят первое разведение (1:10), т.е. 10* почвы на стерильной водопроводной воде и почвенная суспензия охлаждается при 5-7° в течение 20-30 мин., затем производят раститровку суспензии обычным способом. Из каждого разведения делают посев не менее двух объемов по 0,1 или 0,2 см 3 на поверхность почвенного агара, разлитого в стерильные чашки Петри и равномерно шпателем растирают по всей поверхности чашки. Термо-статирование засеянных чашек ведут при (28-30)°С в течение 72 ч. Учет результата: количество колоний на обеих чашках суммируют, делят на два и умножают на степень разведения. Результат выражают числом ко л о необразующих единиц (КОЕ в 1 г почвы).

Определение количества актиномицетов и грибов в почве

Аюгиномицеты (герч. Actis — луч, mucos — гриб) — одноклеточные микроорганизмы, тело состоит из нетитро ванн ого мицелия, который имеет вид ветвящихся таких нитей. У актиномицетов, как и у бактерий, генетическую функцию выполняет нуклеоид. В нитях мицелия находятся зерна хроматина. Размножаются актиномицеты при помощи специальных органов плодоношения, путем прорастания спор, прикрепленных на спороносцах, простым делением, переищурованием и почкованием.

Актиномицеты — факультативные анаэробы, хорошо развиваются при t 25-30°С (оптимальная температура 35-37 °С) на плотных средах. Одни виды растут с образованием плотных гладких колоний, другие — имеют складчатые, бугристые, корковидные, бархатистые, пушистые или мучнистые колонии, которые срастаются со средой и с трудом снимаются петлей. Акти-номицеты могут быть бесцветными или пигментированными (синие, фиолетовые, красные, желтые, оранжевые, зеленые и т.д.), на плотных питательных средах часто образуют воздушный мицелий, на концах которого развиваются споры, придающие колониям определенный цвет.

Грибы Среди грибов встречаются сапрофиты и паразиты.

Наибольшее значение для медицины представляют оомицеты (Оошу-cetus), аскомицеты (Ascomycetes), базидиомицеты (Basidiomycetes), дейтеро-мицеты (Dcuteromycetes), форма клеток у молодых культур может быть круглая, яйцевидная или удлиненная, у зрелых клеток — |рушевидная, булавовидная, веретинообразная, амебовидная. Основным структурным компонентом клеток грибов является мицелий, состоящий из разветвленных бесцветных нитей (гиф). У одних видов он состоит из нсрасчлененной клетки (mucor), у другая (высших грибов) он многоклеточный; у дрожжеподобных грибов (Candida) имеется псевдомицелий.

Установлена большая чувствительность почвенных аюиномицетов и грибов к действию отдельных химических веществ по сравнению с почвенными споровыми и неспоровыми бактериями. Несомненно, что такая разбалансировка равновесия в почвенном микробиоценозе должна рассматривать как отрицательное явление. Актиномицетам и грибам принадлежит большая роль в превращении широкого круга органических и минеральных веществ. Благодаря чрезвычайно выраженным антогонистическим и токсическим свойствам они оказывают большое влияние па формирование микробных почвенных биоценозов, являются продуцентами многих физиологических активных веществ: аминокислот, ферментов, витаминов.

Для учета почвенных акпшомицетов и грибов используются те же разведения почвенной суспензии, что и при учете общей численности микроорганизмов. Как правило, для учета почвенных грибов используют разведение почвенной суспензии 1:10 -1:100, то есть 10 1 -10 3 а при учете актиномицетов -1:100 — 1:10000 (от 10 3 до 10 5 ). Посев производят поверхностным способом, нанося на агаризованные среды 0,1-0,05 см 3 суспензии. Для учета актиномицетов используется чаще всего крахмало-аммиачный агар или агар Ваксмана, при учете грибов — сусло-агар или минеральная среда Чапека. При учете грибов используют добавление в среду веществ, ингибирующих рост бактерий -концентрированную молочную кислоту в количестве 4 мл/л среды. Прибавление такого количества кислоты доводят pH Среды до 4,0-4,5. Кислота добав-

яяется непосредственно перед посевом в расплавленную среду. Поскольку прибавляют концентрированные кислоты, то их предварительно не стерилизуют.

Определение аммопификаторов в почве

Аммонифицирующие мшдкюргагшзмы принимают участие в расщепление белковых соединений до аммиака. Их учитывают на мясо-пептонном агаре, а при необходимости на жидких пептонных средах (шео-пептонный бульон, пептонная вода) с индикаторными бумажками, определяющими аммиак. Для определение выделяющегося аммиака над средой в пробирке подвешивают красную лакмусовую бумажку (при выделении аммиака она синеет) или полоски фильтровальной бумаги, пропитанные реактивом Круппа (от аммиака краснеют). При выращивании почвенных суспензий на мясопептонном агаре результаты выражают в КОЕ (колониеобразующих единиц) на 1 г почвы. При определении этого показателя в жидких средах определяют титр, индекс аммонифицирующих микроорганизмов по последней пробирке, в которой еще обнаруживается аммиак (на 10-е сутки) после термосгагарования при температуре 25-30°С.

Определение токсичности почв по отношению к микроорганизмам

Метод определения степени токсичности почв к микроорганизмам используется в качестве быстрого и достаточно чувствительного теста для получения ориентировочных данных о способности почвы самоочищаться от патогенных и санитарно-показательных микроорганизмов. Кроме того, этот тест оказался также чувствительным при определении влияния химических веществ на почвенный микробиоценоз. Низкая степень токсичности или ее снижение по отношению к патогенным микроорганизмам свидетельствует о наличии или возникновении более благоприятных условий для выживания возбудителей в таких почвах. Это явление неблагоприятное по классам:

1 -отсутствие -0-20 % токсичных образцов

2 — слабо выраженная -21-40% токсичных образцов

3 — средняя -41-60% токсичных образцов

4 — сильно выраженная. 61-80 % токсичных образцов

5 — абсолютная -81 -100 % токсичных образцов

Для определения токсичности почв можно использовать два метода

— качественный и качественно-количественный.

Качественный метод определения токсичности почв.

В стерильную чашку Петри 10 г перемешанной и просеянной почвы и ровным слоем распределяется на половину дна чашки. На дне и крышке чашки записывается номер пробы по журналу и тест-микроорганизм, Затем чашки пе-

реносят в бокс и устанавливают на ровной поверхности. Чашки с почвой заливают 1,5% непитательным агаром в количестве около 10,0 см 3 таким расчетом, чтобы он покрыл слой почвы. После его застывания в чашки вносится питательный агар также в количестве 10 см 3 адекватный тест- микроорганизмам. Из одного почвенного образца готовятся 2 параллельные чашки к каждому микроорганизму. Чашки высушивают под бактерицидными лампами в течение 30 минут. Затем производится посев индикаторных штаммов микроорганизмов.

Посевы производятся петлей, причем движения петли всегда начинают с той части чашки, на которой помещена почва. В качестве контроля производят посевы тех же культур на аналогичные среды, но без почвы.

Посевы инкубируют в зависимости от вида индикаторного микроорганизма. Учет результатов начинается с просмотра контрольного посева. В случае равномерного роста тест-микроба на всей поверхности агаровой пластинки просматривают остальные чашки с посевами. Колонии идеггшфицируются по «форме роста». Кроме тою, из каждой серии посевов с нескольких чашек снимают колонии и производят их идентификацию.

Рост колоний только на участке агаровой пластинки, под которой нет почвы, показывает, что исследованный почвенный образец токсичен (Т). При исследовании некоторых почвенных проб отмечается частичное ингибирование роста тест-микроба. В этих случаях регистрируется маловыраженная токсичность (МАГ).

Качеспытно-кшшгестнтный метод определения токсичности почв

В стерильную чашку Петри также вносится 10 г почвы и распределяют равномерно по всей поверхности, затем, как и при качественном методе, вносится непитательный и питательный агар. В качестве дополнительного барьера между почвой и индикаторным штаммом на поверхности питательной среды укладывают мембранный фильтр.

На матовую поверхность мембранных фильтров простым карандашом наносятся 16 точек, после чего фильтр стерилизуют кипячением. Затем на питательную среду помещают мембранные фильтры (матовой поверхностью вверх) в количестве от 1 до 4-х на одну чашку. На поверхность фильтра в местах, отмеченных точками, производят посев бактериальной петлей (иглой) культуры индикаторного штамма, суспензированного в физиологическом растворе, содержащем около 100 млн. бактериальных клеток в 1мл по оптическому стандарту мутности. Эта манипуляция упрощается при использовании специального штампа в виде металлического диска диаметром около 30 мм. В диск вмонтированы 16 стальных игл, строго одинаковой длины и толщины. Культуры микроорганизмов наливаются в чашки Петри и погружают в них кончики игл стерильного штампа, а затем одновременно производится посев в 16 точках мембранного фильтра. Посевы инкубируют в термостате или анаэро-стате при оптимальной температуре и продолжительности в зависимости от

L Область применения. 4

2., Нормативная ссылка. 4

3. Санит^но-ба1аериологические показатели почвы и их нормирование .. 4

4. Oi6op проб для бактериологического анализа. 6

5. Оборудование, расходные материалы, реактивы, питательные среды, 8

6. Подготовка и обработка почвы для анализа. 9

7. Определение общих колиформных бактерий (БГКП). 10

8. Определите энтерококков. 14

9. Определение CL.perfingens в почве. 16

10. Показатели биологической активности почвы. 17

11. Определение патогенных энтеробактерий родов сальмонелла и ши- 21

физиологических особенностей индикаторною штамма.

Учет результатов производят путем подсчета выросших колоний в точках посева. Процент пророста (Р) высчитывается как количество образовавшихся колоний к количеству посевов. Токсичность определяется по формуле; Т=100-Р, Этим методом, как и качественным, устанавливается абсолютная токсичность, когда на фильтрах не вырастает ни одна колония; отсутствие токсичности — на метах всех посевов вырастают колонии и различная степень токсичности — когда прорастает только часть засеянных точек.

11. Определение патогенных энтеробактерий родов Salmonella н Shigella в

Сущность определения шигелл и сальмонелл заключается в использовании методов накопления патогенных бактерий в средах обогащения с последующим пересевом на плотные селективные и дифференциальные среды с последующим изучением биохимических свойств выделенных культур и их серологическую идентификацию по методике.

Используют не менее двух сред накопления из перечисленных: среду Мюллера Кауфмана, селенитовый бульон, магкиеву среду, тетратионатовый будьон. Для сальмонелл используют любые две среды из четырёх, для шигелл-селенитовую среду.

Проведение исследования аналогично исследованию на коли формы.

Посевы инкубируют при (37±1°С) в течении 18-24часов, затем из каждого флакона делают высевы бактериологической петлей на чашки с плотными селективными средами: для сальмонелл- на висмут-сульфитный агар, ксилозо-лизин-дезоксихалатный агар, для шигелл на бактоагар Плоскирева, среду Эндо или ксилозо-лизии-дезоксихалатный агар. Чашки с посевами инкубируют при температуре (37±1°С) в течении 18-20часов, а в случае отсутствия роста чашки с посевами оставляют ещё на 24часа в термостат. С каждой чашки снимают подозрительные на сальмонеллы и шигеллы колонии в пробирки с дифференци-алъно-диагностическими средами. Окончательное определение биохимических и серологических свойств, био- и сероваров проводят по действующим. МУ 17.04-23/307-84 «Микробиологическая диагностика заболеваний, вызываемых энтеробактериями».

УТВЕРЖДАЮ Заместитель главного государственного санитарного врача Российской Федерации

Дата введения: с момента утверждения

J* Область применения

Настоящий документ является методической базой для осуществления государственного санитарно-эпидемиологического надзора за санитарным состоянием почв населенных мест, сельскохозяйственных угодий, территорий курортных зон и отдельных учреждений. Документ предназначен для лабораторий учреждений Государственной сани тарно-эпидемиологической службы Российской Федерации, а так же лабораторий других организаций, аккредитован]гых в установленном порядке на право проведения указанных испытаний.

2* Нормативная ссылка

1.1. Почва, очистка населенных мест, бытовые и промышленные отходы, санитарная охрана почвы.

Санитарно-эпидемиологические правила и нормы СанПиН 2.1.7.1287-03

12. ГОСТ 17.4.3.01-83, Общие требования к отбору проб почвы

1.4. МУ 2. 1 .7.730-99 Гигиеническая оценка качества почвы населённых мест

1.5. МУ по сшштарно-микробиологическому анализу лечебных грязей № 143-9/316-17

1.6. МУК 4.2,1018-01 Санитарно-микробиолотческий анализ питьевой воды

3. Санитарно-бактериологические показатели почвы и их нормирование

Санитарное состояние почвы — совокупность физико-химических, биологических свойств почвы, определяющих качество и степень её безопасности в

эпидемическом и гигиеническом отношении.

Состав микрофлоры почвы меняется в зависимости от ее глубины. В поверхностном слое почвы (0-10 см) количество микроорганизмов незначительно; это связано с губительным действием прямого солнечного света и низкой влажности почвы. Максимальное количество микроорганизмов обнаруживается на глубине 10-30 см. На глубине 1м выявляются единичные клетки бактерий. Наиболее богата микроорганизмами культурная возделываемая почва (до 5 млрд клеток на 1 г почвы), наименее — почва, бедная влагой и органическими веществами (200млн клеток в 1г).

Оценка санитарного состояния почвы проводится по результатам анализов почв на объектах повышенного риска (детские сады, игровые площадки, зоны санитарной охраны и т.п.) и в санитарно- защитных зонах по санитарно-бактериологическим показателям, которые делятся на косвенные и прямые:

1) Косвепные характеризуют интенсивность биологической нагрузки на почву. Это — санитарно- показательные микроорганизмы; бактерии 1руппы кишечной палочки (общие колиформные бактерии) и энтерококки. В крупных городах с высокой плотностью населения биологическая нагрузка на почву очень велика и как следствие, высоки индексы санитарно-показательных микроорганизмов, что наряду с санитарнохимическими показателями (динамика аммиака и нитратов, санитарное число), свидетельствует о неблагополучии и создали повышенного риска инфицирования. На свежее фекальное загрязнение почвы указывает наличие высокого индекса Б ПОТ при низких титрах шпрнфикаторов, термофилов, а также относительно высокое содержание вегетативных форм С. perfringens. Обнаружение энтерококков всегда свидетельствует о свежем фекальном загрязнении, каковы бы ни были другие показатели.

2) Прямые санитарно-бактериологические показатели эпидемической опасности почвы — обнаружение возбудителей кишечных инфекций (патогенные энтеробактерии, энтеровирусы).

Результаты анализов оцениваются в соответствии с таблицей № 1.

Почву оценивают как «чистую» без ограничений по санитарнобактериологическим показателям при отсутствии патхн^ешшх бактерий и индексе санитарно-показательных микрооргаггизмов до 10 клеток на 1 г. почвы.

О возможности загрязнения почвы патогенными энтеробактериями свидетельствует индекс санитарно-показательных микроорганизмов БГКП (коли-форм) и эктерококков 10 и более клеток/г почвы.

Оценка степени эпидемической опасности почвы

Источник

Методы микробиологического контроля почвы методические рекомендации статус

Методы микробиологического контроля почвы методические рекомендации статус

1. Область применения

2. Нормативная ссылка

3. Санитарно-бактериологические показатели почвы и их нормирование

Методы микробиологического контроля почвы. Методические рекомендации

Способы доставки

Оглавление

Этот документ находится в:

Организации:

Титрационный метод определения индекса ЕГКП (колиформ) в почве*

Титрационный метод.

Метод мембранных фильтров

Определение общей численности почвенных микроорганизмов (ОМЧ)

Определение аммопификаторов в почве

Определение токсичности почв по отношению к микроорганизмам

Качественный метод определения токсичности почв.